2. Измельчитель грубых кормов игк – 30 б
2.1. Устройство и работа измельчителя грубых кормов игк – 30 б
Измельчитель грубых кормов ИГК-30Б предназначен для измельчения соломы и сухих стеблей кукурузы с одновременным расщеплением сечки вдоль волокон. Различают два варианта ИГК-30Б – первый измельчитель навешивают на трактор типа «Беларусь» с приводом от вала отбора мощности трактора, для работы в полевых условиях и при обслуживании нескольких производственных участков.
Вариант ИГК-30Б – второй стационарный, устанавливается в кормоцехах и на кормозаготовительных площадках, привод осуществляется от электродвигателя мощностью 30кВт. Машина состоит из рамы, питающего транспортера, измельчающего аппарата, поворотного дефлектора и электродвигателя.
Рис.6. Измельчитель грубых кормов ИГК-30Б
1- лопатки; 2 – отражатель; 3 – лопасть; 4 и 8 – подвижный и неподвижный диски; 5 – козырек; 6 – дефлектор; 7 – штифты; 9 – приемная камера; 10 и 11 – наклонный и горизонтальный транспортеры
6) и наклонного
прижимного транспортера 10, что механизирует
загрузку корма в машину и способствует
увеличению производительности.Измельчающий аппарат штифтового типа. Штифты в поперечном сечении имеют клиновидную форму и установлены заостренной гранью вперёд по ходу движения, что позволяет осуществлять более интенсивное рубящее действие.
Солома,
подаваемая, питающим транспортером и
уплотняемая наклонным транспортером
10 поступает в приемную камеру 9,
подхватывается воздушным потоком и
лопастями ротора 3 направляется в камеру
измельчения. Под действием воздушного
потока и центробежной силы солома
проходит в промежутки между штифтами
подвижного 4 и штифтами 8 неподвижного
6 дисков, солома разрывается, расщепляется
вдоль и поперек волокон. Измельченный
корм воздушным потоком и лопатками 1
выбрасывается через поворотный дефлектор
6 (технологическая схема). Регулируемый
козырек 5 позволяет получить поток
частиц более концентрированный, без
разбрасывания.
В нижней части приемной камеры имеются отражатель 2 и окно для удаления тяжелых посторонних включений.
Таблица 2 — Техническая характеристика измельчителя ИГК-30Б
Наименование | Единица измерения | Значения |
Производительность | т/час. | 0,8…3,0 |
Высота загрузки корма | мм | |
Высота выгрузки корма | мм | 3350 |
Дорожный просвет | мм | 480 |
Мощность электродвигателя | кВт | 30 |
3.
СоломосилосорезкА рсс-6,0б3.1.Устройство и работа соломосилосорезки рсс-6,0б
Соломосилосорезки предназначены для измельчения стебельчатых кормов резанием с получение резки длиною от 5 до 100 мм. В зависимости от конструкции режущего аппарата соломосилосорезки делятся на дисковые и барабанные. Лезвия барабанных соломосилосорезок представляют собой винтовую линию.
Соломосилосорезка РСС-6,0Б является модернизированным образцом РСС-6 и предназначена для выполнения таких же технологических операций, но отличается более современной конструкцией и обеспечивает высокое качество измельчения. Разработана она в двух вариантах:
-вариант РСС-6,0Б-1- с приводом от электродвигателя для стационарной установки в кормоцехах или на кормозаготовительных площадках;
-вариант РСС-6,0-П для навешивания на
тракторы «Беларусь» с приводом от вала
отбора мощности, рекомендуется для
обслуживания нескольких производственных
участков и для работы у скирды.
Рис. 7 – Соломосилорезка РСС-6
Машина (рис.7) состоит из питающего транспортера 2, режущего аппарата дискового типа 7 и вентилятора-швырялки с трубопроводом и поворотным дефлектором 5. Рама 1 изготовлена в виде салазок позволяющих, перемещать машину на небольшие расстояния.
Привод осуществляется от электродвигателя мощностью 17 кВт через клиноременную передачу или от ВОМ трактора «на прямую».
Измельчаемый
продукт вручную или кормораздатчиком
подают на транспортер питающего
механизма, по мере продвижения слой
измельчающего корма захватывается и
предварительно уплотняется наклонным
планчатым транспортером 3, затем
спрессовывается рифлеными вальцами 4
и в сжатом состоянии удерживается
гребенками 6 при подводе его к лезвиям
ножей. Кроме того, гребенки, прочесывая
слой вдоль стеблей, обеспечивают
перпендикулярность положения их
относительно ножа и тем значительно
повышают равномерность резки по длине
частиц.
Ножи крепятся к диску под углом к радиусу и режут массу со скольжением, чем обеспечивается необходимое качество резания. Крупность измельчения регулируют изменением количества ножей на диске и скоростью движения питающего транспортера путем смены шестерен в передаточном механизме (табл.3).
Таблица 3 — Регулировка измельчения кормов на соломосилосорезки РСС-6Б
Длина резки, мм
Число ножей на диске
6
3
2
Число зубьев сменных шестерен
До 10
10 – 15
20 – 40
30 – 60
60 — 120
17 (53)
23 (47)
— (-)
— (-)
— (-)
17 (53)
35 (35)
47 (23)
— (-)
— (-)
— (-)
23 (47)
35 (35)
47 (23)
Кроме
ножей, на диске 2 (рис.
6) закреплены три
лопасти, которые выбрасывают измельченный
продукт из камеры режущего устройства
и создают воздушный поток, достаточный
для транспортирования корма на расстояние
8 – 10 м. Измельченный корм направляют в
необходимое место поворотным дефлектором
или по трубам.
Соломосилосорезка имеет приспособление для заточки ножей.
Таблица 4
Техническая характеристика соломосилосорезки РСС-6Б
Наименование | Единица измерения | Значения |
1 | 2 | 3 |
Производительность -при измельчении соломы -при измельчении зеленой массы | т/час. | до 1,8 до 7,6 |
Число ножей | шт. | 2 – 6 |
гр. | 3253 | |
Ширина полотна транспортера | мм | 396 |
Контрольные вопросы
Схемы обработки грубых кормов.
Назначение и устройство ИРТ-165, ИГК-30Б, РСС-6,0Б.
Технологический процесс работы машин.
Основные регулировки.
Краткая техническая характеристика.
Литература
Мельников С.
В. Механизация и автоматизация
животноводческих ферм. – Колос, Л.:
Ленинград, 1978. – 560 с.- Животноводческие машины. Справочник «Машиностроение», М.: 1975.
Р.Г. Муллаянов, Л.М. Цой. Техническое обслуживание машин и оборудования животноводческих ферм. М.: 1979.
Механизация и технология производства продукции животноводства/ В.Г. Коба, Н.В. Брагинец, Д.Н. Мурусидзе, В.Ф. Некрашевич. – М.: Колос, 2000. — 528 с.: ил.
Нерсесян В.И. Инструкционно – технологические карты по машинам и оборудованию, применяемым в животноводстве: Учеб. пособие для сред. сел. проф. — техн. училищ. – М.: Высш. шк., 1985. – 128 с., ил.
В. Механизация и автоматизация
животноводческих ферм. – Колос, Л.:
Ленинград, 1978. – 560 с.Содержание
Технология и машины для механической обработки
грубых кормов………………………………………………………4
Измельчитель грубых кормов игк-30б
Для
измельчения стебедьных кормов вдоль и
поперёк волокон предназначен специальный
измельчитель кормов марки ИГК-30Б (рис.
Измельчитель ИКГ-30Б-1 рекомендуется для работы в поевых условиях при обслуживании нескольких производственных участков, а измельчитель ИКГ-30Б-11 — для использования в кормоцехах и на кормозаготовительных площадках.
Измельчитель состоит из рамы 11, питающего транспортера 10, измельчающего аппарата, поворотного рефлектора 5 и электродвигателя 1.
Питатель
(см. рис. 2) состоит из горизонтального 10 и наклонного уплотняющего 9 транспортеров,
обеспечивающих механизацию загрузки
корма в измельчитель. Измельчающий
аппарат относится к штифтовому типу.
Штифты в поперечном сечении имеют
клиновидную форму и установлены
заостренной гранью вперед по ходу
движения, что позволяет осуществлять
более интенсивное рубящее действие.
Солома, подаваемая питательным транспортером 10 в приемную камеру 8, подхватывается воздушным потоком и лопастями 7 ротора направляется в камеру измельчения. Под действием воздушного потока и центробежной силы солома проходит промежутки между штифтами 3 подвижного 2 и неподвижного 6 дисков, где она разрывается на части и расщепляется вдоль волокон. Измельченный корм воздушным потоком и лопатками 12 выбрасывается через поворотный рефлектор 5. Регулируемый козырек 4 позволяет получить поток частиц более концентрированный, без разбрасывания. В нижней части приемной камеры имеется отражатель 13 и окно для удаления посторонних включений.
Данные
опытов по измельчению соломы различной
влажности показали, что с увеличением
влажности от 13 до 36% производительность
ИГК-30Б снижается в 1,6 раза, а удельный
расход энергии удваивается (рис.
3).
Загрузку электропривода контролируют по амперметру, в случае временной перегрузки привод питающего транспортера следует выключить. Максимальное отклонение стрелки амперметра не должно превышать 55 А (до красной черты).
При переездах трактора с измельчителем дефлектор складывается в транспортное положение (см. плакат), а скорость трактора не должна превышать 15 км/ч.
Регулировки измельчителя предусматривают: вертикальное положение рычага включения кулачковой муфты, нормальное натяжение транспортеров и цепей, затяжку гаек механизма поворота дефлектора и натяжение троса козырька.
Рис.
2. Технологическая схема измельчителя
кормов ИГК-30Б: 1
— электродвигатель; 2 — дисковый ротор;
3 — штифты ротора; 4 — регулируемый
козырек; 5 — поворотный рефлектор; 6—
неподвижный диск; 7 — лопасти ротора; 8
— приемная камера; 9 — уплотняющий
транспортер; 10 — питающий транспортер;
11 — рама; 12 — лопатки; 13 — отражатель.
Рис. 3. График зависимости производительности Q и удельной энергоемкости ИГК-30Б Vуд от влажности соломы W
Shakl igk-30B qo’pol em-xashak mashinasi Автоматлаштири-WPS Офис
Скачать 8.5 Кб.
|
Bog’liq
Avtomatlashtiri-WPS Office
16538, SEMINAR 3, SEMINAR 3, sotsiologiya mustaqil, sotsial guruhlar va sotsial institutlar, Самостаятелная работа по предмету, 1 yoriqnoma -2020, Офис Автоматлаштири-WPS, Озодбек чорва, 0z0d, компьютер алгебраи, Ищи дастур БМК 2020-2021-2-курс кундузги, Жасур кибер амалий2, 14-й-Корхона-иктисодийоти.Окув-колланма.-Махмедов-Э.Х-ва -бош.-Т-2006
| IGK-30B qo’pol ozuqa maydalagichi somon va quruq makkajo’xori poyalarini maydalash uchun mo’ljallangan, shu bilan birga pirzola tolalar bo’ylab bo’linadi.  ИГК-30Б нинг иккита варианти мавджуд — биринчи майдалагич тракторнинг ПТО о’ки бошкарадиган «Белорусия» русумли трактора, далада ишлаш учун ва бир нечта ишлаб чикариш майдончаларига хизмат корсатишда осиб койилган.IGK-30B versiyasi ikkinchi statsionar bo’lib, u ozuqa do’konlarida va em-xashak yig’ish joylarida o’rnatiladi, haydovchi 30 kVt quvvatga ega elektr motor tomonidan amalga oshiriladi. Машина рамка, беслеме конвейери, майдалаш мосламаси, бурилиш дефлектори ва электр моторидан иборат. Шакл.6. IGK-30B qo’pol em-xashak mashinasi 1 — лопатка; 2 — отражатель; 3 — пичок; 4 ва 8 — харакатланувчи ва каттик дисклар; 5 — козырек; 6 — дефлектор; 7 — пинляр; 9 — габул кылиш камераси; 10 ва 11 — мойил ва горизонтальный конвейер ИГК-30Б майдалагич озиклантирувчиси беслеме 11 (6-расм) ва мойыл босим отказгич 10 дан иборат бо’либ, улар машиныга йем тушишини механизациялаштиради ва унумдорликнинг ошишига йордам беради. Pin типидаги silliqlash аппарат. Besleme konveyeri bilan ta’minlangan va moyil konveyer 10 tomonidan siqilgan somon qabul qiluvchi kameraga 9 kirib, havo oqimi bilan olinadi va ротор pichoqlari 3 tomonidan silliqlash kamerasiga yo’naltiriladi. Хаво окими ва маркиздан кочирувчи куч та’сирида сомон козг’алувчан 4 пиналари ва стационар 6 дискнинг пинлари 8 орасидаги бо’шликларга о’тади, сомон парчаланади, толалар бойлаб ва бойлаб бо’линади. Ezilgan ozuqa aylanma дефлектор 6 orqali havo oqimi ва pichoqlar 1 (oqim диаграммаси) orqali tashlanadi. Sozlanishi козырек 5 ko’proq konsentratsiyalangan zarrachalarni tarqalmasdan oqishiga imkon beradi. Qabul qilish kamerasining pasteki qismida reflektor 2 va og’ir aralashmalarni tozalash uchun oyna mavjud. Jadval 2 — IGK-30B tegirmonining texnik xususiyatlari Скачать 8. Do’stlaringiz bilan baham: |
Pinslar xanjar shaklidagi kesimga ega va harakatlanish yo’nalishi bo’yicha oldinga siljigan chet bilan o’rnatiladi, bu esa qizg’in maydalashga imkon beradi.
5 Кб. Ma’lumotlar bazasi mualliflik huquqi bilan himoyalangan ©fayllar.org 2022
ma’muriyatiga murojaat qiling
Profiling the B/T cell receptor repertoire of lymphocyte производные клеточные линии
1. van Dongen JJ, Langerak AW, Bruggemann M, Evans PA, Hummel M, Lavender FL, Delabesse E, Davi F, Schuuring E, Garcia-Sanz R, et al. Дизайн и стандартизация праймеров и протоколов ПЦР для обнаружения рекомбинаций генов клонального иммуноглобулина и Т-клеточного рецептора при подозрении на лимфопролиферацию: отчет о согласованном действии БИОМЕД-2 BMh5-CT98-3936. Лейкемия. 2003;17(12):2257–2317. doi: 10.1038/sj.leu.2403202. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Warren EH, Matsen FA, Chou J. Высокопроизводительное секвенирование антигенных рецепторов B- и T-лимфоцитов в гематологии. Кровь. 2013;122(1):19–22. doi: 10.
1182/blood-2013-03-453142. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Клингер М., Чжэн Дж., Эленитоба-Джонсон К.С., Перкинс С.Л., Фахам М., Бахлер Д.В. Секвенирование IgVH нового поколения, похожее на CLL, моноклональный В-клеточный лимфоцитоз выявляет частую олигоклональность и продолжающуюся гипермутацию. Лейкемия. 2016;30(5):1055–1061. doi: 10.1038/leu.2015.351. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Барретина Дж., Капонигро Г., Странский Н., Венкатесан К., Марголин А.А., Ким С., Уилсон С.Дж., Лехар Дж., Крюков Г.В., Сонькин Д. и соавт. Энциклопедия линий раковых клеток позволяет прогнозировать чувствительность к противоопухолевым препаратам. Природа. 2012;483(7391): 603–607. doi: 10.1038/nature11003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Лаппалайнен Т., Саммет М., Фридландер М.Р., Т Хоэн П.А., Монлонг Дж., Ривас М.А., Гонсалес-порта М., Курбатова Н., Грибель Т., Феррейра ПГ и др. Секвенирование транскриптома и генома раскрывает функциональные различия у людей.
Природа. 2013;501(7468):506–511. doi: 10.1038/nature12531. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
6. Болотин Д.А., Пославский С., Митрофанов И., Шугай М., Мамедов И.З., Путинцева Е.В., Чудаков Д.М. MiXCR: программное обеспечение для всестороннего профилирования адаптивного иммунитета. Нат Методы. 2015;12(5):380–381. doi: 10.1038/nmeth.3364. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
7. Лангерак А.В., ван Донген Дж.Дж.М. Множественные клональные продукты Ig/TCR: значение для интерпретации результатов клональности. Дж Гематоп. 2012;5(1):35–43. doi: 10.1007/s12308-011-0129-1. [CrossRef] [Google Scholar]
8. Пфайфер С., Перес-Андрес М., Людвиг Х., Сахота С.С., Зоджер Н. Оценка клональной иерархии при множественной миеломе легких цепей: выводы против гипотезы стволовых клеток миеломы. Лейкемия. 2011;25(7):1213–1216. doi: 10.1038/leu.2011.70. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
9. Катервуд М.А., Гонсалес Д., Паттон С., Доббин Э., Венкатраман Л., Александр Х.Д.
Улучшенная оценка клональности при неходжкинских лимфомах зародышевого/постгерминального центра с высокой частотой соматической гипермутации. Джей Клин Патол. 2007;60(5):524–528. doi: 10.1136/jcp.2006.038984. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Jiang Y, Nie K, Redmond D, Melnick AM, Tam W, Elemento O. VDJ-Seq: анализ глубокого секвенирования реаранжированного гена тяжелой цепи иммуноглобулина выявить закономерности клональной эволюции В-клеточной лимфомы. J Vis Exp. 2015;106:e53215. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
11. Купперс Р., Энгерт А., Хансманн М.Л. лимфома Ходжкина. Джей Клин Инвест. 2012;122(10):3439–3447. doi: 10.1172/JCI61245. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Matsuo Y, Drexler HG. Создание и характеристика линий клеток-предшественников В-клеток человека при лейкемии. Лейк Рез. 1998;22(7):567–579. doi: 10.1016/S0145-2126(98)00050-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
13.
Eswaran J, Sinclair P, Heidenreich O, Irving J, Russell LJ, Hall A, Calado DP, Harrison CJ, Vormoor J. Контрольная точка рецепторов пре-B-клеток в острый лимфобластный лейкоз. Лейкемия. 2015;29(8): 1623–1631. doi: 10.1038/leu.2015.113. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
14. Щепански Т., Бейшуйзен А., Понгерс-Виллемсе М.Дж., Хален К., Ван Веринг Э.Р., Вийхуйс А.Дж., Тиббе Г.Дж., Де Брюйн М.А., Ван Донген Дж.Дж. Перестройки гена Т-клеточного рецептора перекрестного происхождения происходят более чем в девяноста процентах случаев острого лимфобластного лейкоза предшественника-В у детей: альтернативные мишени ПЦР для обнаружения минимальной остаточной болезни. Лейкемия. 1999;13(2):196–205. doi: 10.1038/sj.leu.2401277. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
15. ван дер Вельден В.Х., Щепански Т., Вийхуйс Дж.М., Харт П.Г., Хогевен П.Г., Хоп В.К., ван Веринг Э.Р., ван Донген Дж.Дж. Возрастные закономерности генных перестроек иммуноглобулина и рецептора Т-клеток при предшественнике-B-ALL: значение для выявления минимальной остаточной болезни.
Лейкемия. 2003; 17 (9): 1834–1844. doi: 10.1038/sj.leu.2403038. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Ding L-W, Tan K-T, Sun Q-Y, Lao Z-T, Yang H, Jiang N, Chien W, Xiao J-F, Loh X-Y, Huang M-L и др. Анализ клональности и клональной эволюции педиатрического ОЛЛ на основе перегруппировки В-клеточного рецептора/Т-клеточного рецептора. Бр Дж Гематол. 2018. 10.1111/bjh.15179. [Epub перед печатью]. [PubMed]
17. Geng H, Hurtz C, Lenz KB, Chen Z, Baumjohann D, Thompson S, Головизнина NA, Chen WY, Huan J, LaTocha D, et al. Самоусиливающаяся активация обратной связи между сигналами BCL6 и рецептора пре-В-клеток определяет отдельный подтип острого лимфобластного лейкоза. Раковая клетка. 2015;27(3):409–425. doi: 10.1016/j.ccell.2015.02.003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Трагезер Д., Якобуччи И., Нахар Р., Дуй С., фон Леветцов Г., Клемм Л., Парк Э., Шух В., Грубер Т., Херцог С., и другие. Опосредованная пре-В-клеточными рецепторами остановка клеточного цикла при остром лимфобластном лейкозе с филадельфийской хромосомой требует функции IKAROS.
J Эксперт Мед. 2009 г.;206(8):1739–1753. doi: 10.1084/jem.200
19. Muschen M. Обоснование нацеливания на сигнальный путь пре-B-клеточного рецептора при остром лимфобластном лейкозе. Кровь. 2015;125(24):3688–3693. doi: 10.1182/blood-2015-01-567842. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Варано Г., Раффель С., Сормани М., Занарди Ф., Лонарди С., Засада С., Перучо Л., Петрочелли В., Хааке А., Ли А.К. и др. др. Рецептор В-клеток контролирует приспособленность клеток лимфомы, управляемых MYC, посредством ингибирования GSK3beta. Природа. 2017;546(7657):302–306. doi: 10.1038/nature22353. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
21. Бюхнер М., Сваминатан С., Чен З., Мушен М. Механизмы контроля контрольных точек пре-В-клеточных рецепторов и его онкогенная подрывная деятельность при остром лимфобластном лейкозе. Immunol Rev. 2015;263(1):192–209. doi: 10.1111/imr.12235. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22.
Swaminathan S, Duy C. Muschen M Баланс BACh3-BCL6 регулирует отбор в контрольной точке рецептора пре-B-клеток. Тренды Иммунол. 2014;35(3):131–137. doi: 10.1016/j.it.2013.11.002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Сваминатан С., Хуанг С., Гэн Х., Чен З., Харви Р., Канг Х., Нг С., Титц Б., Хурц С., Садия М.Ф. и соавт. BACh3 опосредует негативный отбор и р53-зависимую супрессию опухоли в контрольной точке пре-В-клеточного рецептора. Нат Мед. 2013;19(8):1014–1022. doi: 10.1038/nm.3247. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Ding LW, Sun QY, Tan KT, Chien W, Thippeswamy AM, Eng Juh Yeoh A, Kawamata N, Nagata Y, Xiao JF, Loh XY , и другие. Мутационный ландшафт острого лимфобластного лейкоза у детей. Рак Рез. 2017;77(2):390–400. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-1303. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Barbey S, Gogusev J, Mouly H, Le Pelletier O, Smith W, Richard S, Soulie J, Nezelof C.
Клеточная линия DEL: « злокачественный гистиоцитоз» CD30+ t(5;6)(q35;p21) клеточная линия. Инт Джей Рак. 1990;45(3):546–553. doi: 10.1002/ijc.2910450329. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Piao W, Chau D, Yue LM, Kwong YL, Tse E. Триоксид мышьяка разрушает слитый белок NPM-ALK и ингибирует рост ALK-положительной анапластической крупноклеточной лимфомы. Лейкемия. 2017;31(2):522–526. doi: 10.1038/leu.2016.311. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
27. Уиттакер С., Хоппе Р., Принц Х.М. Как я лечу грибовидный микоз и синдром Сезари. Кровь. 2016;127(25):3142–3153. doi: 10.1182/blood-2015-12-611830. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Лангерак А.В., ван Ден Беемд Р., Вулверс-Теттеро И.Л., Бур П.П., ван Лохем Э.Г., Хоойкаас Х., ван Донген Дж.Дж. Молекулярный и проточный цитометрический анализ репертуара Vbeta для оценки клональности в пролиферации зрелых TCRalphabeta T-клеток. Кровь. 2001;98(1):165–173. дои: 10.1182/кровь.V98.1.165. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29.
Сандберг Ю., Верхааф Б., ван Гастель-Моль Э.Дж., Вольверс-Теттеро И.Л., де Вос Дж., Маклеод Р.А., Ноордзий Дж.Г., Дик В.А., ван Донген Дж.Дж., Лангерак А.В. . Линии Т-клеток человека с четко определенными реаранжировками гена рецептора Т-клеток в качестве контроля для мультиплексных пробирок для полимеразной цепной реакции BIOMED-2. Лейкемия. 2007;21(2):230–237. doi: 10.1038/sj.leu.2404486. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Yao R, Schneider E. Обнаружение специфичных для B- и T-клеток генных перестроек в 13 клеточных линиях и 50 клинических образцах с использованием BIOMED-2 и оригинальных праймеров InVivoScribe. . Лейк-лимфома. 2007;48(4):837–840. дои: 10.1080/10428190601187729. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Cao S, Strong MJ, Wang X, Moss WN, Concha M, Lin Z, O’Grady T, Baddoo M, Fewell C, Renne R и др. . Высокопроизводительный анализ вирома на основе секвенирования РНК 50 клеточных линий лимфомы из проекта энциклопедии раковых клеточных линий. Дж Вирол.
2015;89(1):713–729. doi: 10.1128/ОВИ.02570-14. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Strong MJ, Xu G, Morici L, Splinter Bon-Durant S, Baddoo M, Lin Z, Fewell C, Taylor CM. Flemington EK Микробное загрязнение в секвенировании следующего поколения: последствия для анализа клинических образцов на основе последовательности. PLoS Патог. 2014;10(11):e1004437. doi: 10.1371/journal.ppat.1004437. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Cibulskis K, McKenna A, Fennell T, Banks E, DePristo M, Getz G. ContEst: оценка перекрестного загрязнения человеческих образцов в данных секвенирования следующего поколения. Биоинформатика. 2011;27(18):2601–2602. doi: 10.1093/биоинформатика/btr446. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Koeffler HP, Golde DW. Хронический миелогенный лейкоз — новые концепции (первая из двух частей) N Engl J Med. 1981;304(20):1201–1209. doi: 10.1056/NEJM198105143042004. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
35.
Миновада Дж., Цубота Т., Гривз М.Ф., Уолтерс Т.Р. Линия клеток лейкемии человека не-T, не-B (NALM-1): установление клеточной линии и наличие антигенов, связанных с лейкемией. J Natl Cancer Inst. 1977; 59 (1): 83–87. doi: 10.1093/jnci/59.1.83. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Uesugi H, Atari E. Установление и патологоанатомическое исследование новой низкодифференцированной муцинозной клеточной линии рака желудка. Нихон Шокакибё Гаккай Дзаси. 1995;92(1):19–25. [PubMed] [Академия Google]
37. Munari F, Lonardi S, Cassatella MA, Doglioni C, Cangi MG, Amedei A, Facchetti F, Eishi Y, Rugge M, Fassan M, et al. Связанные с опухолью макрофаги как основной источник APRIL при MALT-лимфоме желудка. Кровь. 2011;117(24):6612–6616. doi: 10.1182/blood-2010-06-293266. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Otsuki T, Nakazawa N, Taniwaki M, Yamada O, Sakaguchi H, Wada H, Yawata Y, Ueki A. Создание новой линии клеток миеломы человека, KMS-18 , имеющий t (4; 14) (p16.3; q32.
3), происходящий от случая, фенотипически трансформированного из Ig A-лямбда в BJP-лямбда и связанного с гипераммониемией. Int J Oncol. 1998;12(3):545–552. [PubMed] [Google Scholar]
39. Райан Дж.Л., Кауфманн В.К., Рааб-Трауб Н., Оглсби С.Е., Кэри Л.А., Галли М.Л. Клональная эволюция лимфобластоидных клеточных линий. Лабораторное расследование. 2006;86(11):1193–1200. doi: 10.1038/labinvest.3700472. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Plagnol V, Uz E, Wallace C, Stevens H, Clayton D, Ozcelik T, Todd JA. Экстремальная клональность в линиях лимфобластоидных клеток с последствиями для анализа экспрессии аллелей. ПЛОС Один. 2008;3(8):e2966. doi: 10.1371/journal.pone.0002966. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Варди А., Влахоникола Э., Карипиду М., Сталика Э., Бикос В., Геменеци К., Марамис С., Сиорента А., Анагностопулос А., Посписилова С. , и другие. Ограничения в репертуаре Т-клеток при хроническом лимфоцитарном лейкозе: высокопроизводительное иммунопрофилирование поддерживает селекцию по общим антигенным элементам.
Лейкемия. 2017;31(7):1555–1561. doi: 10.1038/leu.2016.362. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Бикос В., Сталика Э., Балиакас П., Дарзентас Н., Дэвис З., Траверс-Глеэн А., Дагклис А., Канеллис Г., Анагностопулос А., Цафтарис А. и др. Выбор антигенных рецепторов при лимфоме маргинальной зоны селезенки: дополнительная поддержка на основе анализа репертуара генов легкой цепи иммуноглобулина. Лейкемия. 2012;26(12):2567–2569.. doi: 10.1038/leu.2012.207. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Dagklis A, Ponzoni M, Govi S, Cangi MG, Pasini E, Charlotte F, Vino A, Doglioni C, Davi F, Lossos IS, et al. Репертуар генов иммуноглобулина при лимфомах придатков глаза: намеки на природу антигенной стимуляции. Лейкемия. 2012;26(4):814–821. doi: 10.1038/leu.2011.276. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Blachly JS, Ruppert AS, Zhao W, Long S, Flynn J, Flinn I, Jones J, Maddocks K, Andritsos L, Ghia EM, et al. Последовательность транскрипта иммуноглобулина и вычисление соматической гипермутации из невыбранных считываний РНК-секвенций при хроническом лимфоцитарном лейкозе.
Proc Natl Acad Sci U S A. 2015;112(14):4322–4327. doi: 10.1073/pnas.1503587112. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Лангерак А.В., Гроенен П.Дж., Брюггеманн М., Бельджорд К., Беллан С., Бонелло Л., Бун Э., Картер Г.И., Катервуд М., Дави Ф. и др. Руководство EuroClonality/BIOMED-2 по интерпретации и отчету о тестировании клональности Ig/TCR при подозрении на лимфопролиферацию. Лейкемия. 2012;26(10):2159–2171. doi: 10.1038/leu.2012.246. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Gimelbrant A, Hutchinson JN, Thompson BR, Chess A. Широко распространенная моноаллельная экспрессия на аутосомах человека. Наука. 2007;318(5853):1136–1140. doi: 10.1126/science.1148910. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Kim E, Hurtz C, Koehrer S, Wang Z, Balasubramanian S, Chang BY, Muschen M, Davis RE, Burger JA. Ибрутиниб ингибирует прогрессирование острого лимфобластного лейкоза до BCR+ B-клеток, воздействуя на BTK и BLK. Кровь.
